对于抗体检测项目，有一种检测模式是如下所示的（以新冠为例）：
这种检测模式我不知道有多少厂家在用，我个人觉得其实是存在诸多弊端的。
比如，正常人血清中的IgG含量为7-16mg/mL，这是相当大的一个含量，如果血清不稀释直接上样的话，胶体金标记的那点鼠抗人IgG根本是不够用的，直接就hook了。但是如果是稀释的话，尤其是成百上千倍的稀释，有效的IgG能否还能测试出来，那就不好说了。而且对于这种检测模式，我不知道大家注意没有，即使是测试阴性血，不同的人测试出来，C线有明显的深浅不一的情况！尤其是到了医院里样本量上去了，总是被投诉C线出线较浅或根本不出线，这是为什么呢？
如果血清中人IgG含量较低的时候，血清中的人IgG与胶体金上的鼠抗人IgG结合的比较松散，留有足够多的空间可以和C线上面的羊抗鼠去结合，所以这时候的C线应该还可以出的比较深；
血清中的人IgG一旦量足够多，那么人IgG几乎就把胶体金上标记的鼠抗人IgG覆盖掉了，几乎留不出多余的空间可以和C线的羊抗鼠去反应，所以这时候的C线就出的很浅，甚至不出。
由于不同的人血清中IgG的含量是不同的，所以就导致了C线的忽深忽浅。
现在很多厂家都推荐自己的鸡IgY和羊抗鸡做配对去制备独立C线，使得C线相对于整个系统相对独立，不受干扰。这个想法是可以的，但是使用的时候要有技巧，不能过分的独立，否则你的C线对于你的conjugate（鼠抗人IgG-胶体金）就没有了质控意义了。
通常的做法就是用鸡IgY当作封闭抗体用，尤其是对于定量试剂，这种做法是可以增加你的检测上限的。
另外在这里需要说明的是，鸡IgY的使用效果可能并没有销售厂家宣贯的那么好，也会有产生假阳的时候，在这种情况下，鸡IgY可能还没有鼠抗兔、鼠抗羊之类的好用，这个就要看自己项目的具体情况了。
还有，独立C线的引入是要增加试剂成本的，对于本就不怎么赚钱的项目，再考虑一下吧。
编辑：Jason | 校对：Harris | 责编：Hillson
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